細胞膜是一種特殊生物膜，不僅保證了細胞內各種生理反應有序進(jìn)行，也實(shí)現了物質(zhì)、能量和信號的正常傳導，其大部分功能依靠細胞膜上的膜蛋白完成。膜蛋白提取的難點(diǎn)較多，主要原因是膜蛋白在生物體內的表達水平較低，具有強的疏水特性，并且通常在實(shí)驗條件下難以維持正確構象。下面讓我們一起來(lái)看看常見(jiàn)的膜蛋白提取方法都有什么吧！
一、先分離膜，然后提取
如選用冷熱交替法、反復凍融法、超聲破碎法、玻璃勻漿法、自溶法和酶處理法使得細胞破碎，然后通過(guò)剃度離心得到含有膜蛋白的粗組分。
?。ɡ纾簃ichael11液氮研磨組織→加入勻漿緩沖液及蛋白酶抑制劑→差速離心→蔗糖密度梯度離心→收集37%與41%間的成分，即為質(zhì)膜部分→裂解即可收集膜蛋白）。
二、用特殊的去污劑選擇性的分離
采用去垢劑將疏水蛋白從其膜結構中溶解下來(lái)，然后將蛋白質(zhì)穩定。去垢劑的選擇通常是依據對所需要蛋白質(zhì)的提取效率來(lái)確定，但在某些情況下，還要考慮到以后的純化步驟。雖然許多膜蛋白必須在去垢劑存在的情況下進(jìn)行純化，但最終仍可能需要除去去垢劑。在設計膜蛋白溶解方案時(shí)，必須考慮某一去垢劑的特殊性質(zhì)。如tritonX-100在280nm處有吸收，如果某蛋白質(zhì)的測試與280 nm處的吸收有關(guān)，就應避免使用這類(lèi)去垢劑。將膜制劑與胞質(zhì)蛋白及細胞核分離后，再進(jìn)一步從細胞膜制劑中將所需的膜蛋白增溶下來(lái)。這種做法的好處是可以用強烈的去垢劑提取細胞骨架的相關(guān)蛋白，而無(wú)需考慮胞質(zhì)蛋白、細胞核成分或染色質(zhì)成分的混入。使用這種方法所獲得的膜蛋白，無(wú)論在種類(lèi)上還是數量上，都比酸溶解法所得到的蛋白（＜5000 Da）要多。
一般提取的膜蛋白量往往只占膜蛋白總量的不足0.1%，所以充分的膜蛋白的提取，無(wú)疑對于研究膜蛋白的結構和功能都是非常重要的。第二種方法簡(jiǎn)單，可靠，但有時(shí)含有其他蛋白。一般的都是利用4度時(shí)所有的蛋白質(zhì)原則上都溶于TritonX-114水溶液，在溫度超過(guò)20度時(shí)，此溶液分為水相和去污相；此時(shí)親水性蛋白溶于水相，疏水的膜蛋白溶于去污劑相中。利用此性質(zhì)可提取膜蛋白。
三、膜蛋白色譜（CMP）
CMP+分離強疏水性蛋白、多肽混合物的層析系統，一般有去垢劑（如SDS）溶解膜蛋白后形成SDS-融膜蛋白，并由羥基磷灰石為固定相的柱子分離純化。羥基磷灰石柱具有陰離子磷酸基團（P-端），又具有陽(yáng)離子鈣（C-端），與固定相結合主要決定于膜蛋白的大小、SDS結合量有關(guān)。利用原子散射法研究cAMP的分離機制發(fā)現，樣品與SDS結合后在離子交換柱上存在SDS分子、帶電荷氨基酸與固定相中帶電離子間的交換，從而達到分級分離的目的。
四、離心柱法提取膜蛋白
高滲的蛋白裂解液讓細胞溶漲破裂后，超高速離心。
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